Презентация на тему "Микробиологическая диагностика инфекционно-воспалительных процессов дыхательных путей и ЛОР органов"

Содержание

• 
  Слайд 1
  

  Микробиологическая диагностика инфекционно-воспалительных процессов дыхательных путей и ЛОР органов

• 
  Слайд 2

  Классификация заболеваний ВДП, НДП и ЛОР органов

  Специфические инфекции– дифтерия, коклюш, менингит – могут быть вызваны специфическими возбудителями: Corynebacteriumdiphtheriae Bordetella pertussis Neisseria meningitidis

• 
  Слайд 3
  

  Неспецифические инфекции– отит, риносинусит, тонзиллофарингит, эпиглоттит, бронхит, пневмония, абсцесс легкого, эмпиема плевры – вызываются условно-патогенными микроорганизмами

• 
  Слайд 4

  Этиологически значимые микроорганизмы – возбудители инфекций ВДП

  Эпиглоттит Бактерии Haemophilusinfluenzae Streptococcus pneumoniae Staphylococcus aureus Тонзиллофарингит Бактерии Streptococcus гр.A (pyogenes) Streptococcus гр.C Archanobacteriumhaemolyticum Chlamydia pneumoniae Neisseria gonorrhoeae Mycoplasma pneumoniae Вирусы - 70%в общей структуре возбудителей

• 
  Слайд 5
  

  Этиологически значимые микроорганизмы – возбудители инфекций ВДП (продолжение)

  Бактерии Streptococcus pneumoniae - 46% Haemophilusinfluenzae- 35% Staphylococcus aureus Moraxella catarrhalis- 4% Streptococcus гр.A (pyogenes) Chlamydia pneumoniae Pseudomonas aeruginosa Анаэробы - 4-11% Риносинусит Вирусы Грибы Aspergillus (аллергический синусит) Hyphomycetes (аллергический синусит) Zygomycetes

• 
  Слайд 6
  

  Этиологически значимые микроорганизмы – возбудители инфекций ЛОР-органов

  Наружныйотит Грибы Aspergillus spp. Candida albicans Бактерии Pseudomonas aeruginosa Staphylococcus aureus Streptococcus гр.A (pyogenes)

• 
  Слайд 7
  

  Этиологически значимые микроорганизмы – возбудители инфекций ЛОР-органов(продолжение)

  Среднийотит Бактерии Streptococcus pneumoniae– 60% Haemophilusinfluenzae - 10% Moraxella catarrhalis - 10% Staphylococcus aureus - 5% Streptococcus гр.A (pyogenes) - 10% Анаэробы - 5% Вирусы

• 
  Слайд 8

  Этиологически значимые микроорганизмы – возбудители инфекций НДП

  Бактерии Haemophilus influenzae- 43% Streptococcus pneumoniae - 30% Moraxella catarrhalis - 17% Mycoplasma pneumoniae - 5% Chlamydia pneumoniae – 5% Вирусы Бронхит

• 
  Слайд 9
  

  Этиологически значимые микроорганизмы – возбудители инфекций НДП (продолжение)

  Бактерии Staphylococcus aureus Streptococcus pneumoniae Streptococcus гр.A (pyogenes) Bacteroides fragilis Klebsiella pneumoniae (и др.грамотриц.п-ки) Actinomyces spp. Mycobacterium tuberculosis Эмпиема Грибы Aspergillus spp. Pneumocystis carinii Простейшие Entamoeba histolytica

• 
  Слайд 10
  

  Пневмония Бактерии Streptococcus pneumoniae - 60% Staphylococcus aureus – 10% Haemophilus influenzae - 10% Другие – 20%: Mycoplasma pneumoniae Chlamydia (C.trachomatis, C. pneumoniae, C.psittaci) Klebsiella pneumoniae (идр.Enterobacteriaceae) Pseudomonas aeruginosa Burholderia pseudomallei Legionella pneumophila Francisella tularensis Bacteroides fragilis Nocardia spp.

• 
  Слайд 11
  

  Пневмония Вирусы Грибы Pneumocystis carinii Cryptococcus neuformans Histoplasma capsulatum Blastomyces dermatitidis Coccidioides brasiliensis Aspergillus spp. Phycomyces spp. Простейшиеи паразиты Ascaris lumbricoides Srtongyloides stercoralis Toxoplasma gondii

• 
  Слайд 12

  Этапы микробиологического исследования

  Получение проб биоматериала (носоглоточные мазки, аспират из пазух, мазки и аспираты из уха, мокрота, промывные воды бронхов или трахеи)

• 
  Слайд 13

  Процедура взятия биоматериала

  Взятие мазка из зева Взятие мазка из носовой полости

• 
  Слайд 14

  Бактериоскопическое исследование

  C.diphtheriae окраска по Леффлеру C.diphtheriae окраска по Нейссеру S. pneumoniaeв гное. Окраска по Граму. Вокруг диплококков видна неокрашенная капсула N/ meningitidisв гное. Окраска по Граму. Внутриклеточное расположение диплококков

• 
  Слайд 15

  Этапы бактериологического исследования

  Культивирование проб Streptococcus pneumoniae Streptococcus гр.A (pyogenes) Бета-гемолитические стрептококки Haemophilus influenzae Moraxella catarrhalis Corynebacterium diphtheriae Haemophilus parainfluenzae

• 
  Слайд 16

  Этапы микробиологического исследования

• 
  Слайд 17
  

  Определение чувствительности к антибиотикам для клинически значимых культур

• 
  Слайд 18

  Интерпретация результатов

  Для специфических инфекций (дифтерия, коклюш, менингит) – в норме результат отрицательный

• 
  Слайд 19

  Интерпретация результатов (продолжение)

  *Микробиологический справочник для клиницистов Дж.Х.Йоргенсен, М.А.Пфаллер 2006) Для неспецифических инфекций – в норме встречаются* Полость носа «Зеленящие» стрептококки Коагулазоотрицательные стафилококки Neisseria spp. Haemophilus spp. Полость рта и ротоглотки «Зеленящие» стрептококки Коагулазоотрицательные стафилококки Corynebacterium spp. Micrococcus spp. Neisseria spp. Haemophilus spp. Stomatococcus spp. Peptostreptococcus spp. Fusobacterium spp. Porphyromonas spp. Prevotella spp. Veillonella spp. Actinomyces spp. Eubacterium spp. Propionibacterium spp. Candida spp. Наружное ухо Коагулазоотрицательные стафилококки Corynebacterium spp. Propionibacterium spp.

• 
  Слайд 20

  Преаналитические требования(общие)

  Биоматериал целесообразно получать до начала антимикробной терапии Материал берут непосредственно из очага инфекции или исследуют клинически значимый биоматериал (мокрота, дифтерийные пленки и т.п.) Соблюдение асептики, избегая контаминации посторонней микрофлорой Количество материала должно быть достаточным для проведения исследования Сроки и температурный режим при доставке должны соответствовать виду биоматериала, цели исследования Сопроводительные документы (бланки направлений) должны быть оформлены максимально информативно в соответствии с пунктами

• 
  Слайд 21
  

  Преаналитические требования по видам биоматериала Материал при инфекциях ВДП

  Берут натощак или через 2ч. после еды стерильным тампоном в среду Эймс с углем. Собирают материал с задней поверхности глотки, миндалин и участков воспаления или изъязвления слизистой, не касаясь губ, щек, языка и язычка. Тампон погрузить в среду Эймс с углем Не рекомендуется исследовать промывную жидкость и мазки из носоглотки, т.к. образцы контаминируются нормальной микрофлорой ВДП Содержимое аспирационного шприца после пункции верхнечелюстной пазухи переносят на стерильный тампон и затем в среду Эймс с углем Вводят тампон в носовой ход до упора на уровне носовой раковины (около 2,5 см) и вращательными движениями собирают материал со слизистой носа, повторяют процедуру в другом носовом ходе этим же тампоном. Тампон погрузить в среду Эймс с углем Очищают наружный слуховой проход слабым раствором антисептика, после прокола барабанной перепонки врач шприцем набирает жидкость и далее переносит ее на стерильный тампон, входящий в состав транспортной среды Эймс с углем. При прободении барабанной перепонки экссудат собирают стерильным тампоном, входящим в состав транспортной среды Эймс с углем и затем помещают в пробирку со средой Обрабатывают кожу 70% этиловым спиртом и промывают стерильным изотоническим раствором (физраствором) Материал из очага берут стерильным тампоном , входящим в состав транспортной среды Эймс с углем и затем помещают в пробирку со средой Образцы из стенки глотки Мазки из носа Аспират из носовых пазух Материал при воспалении наружного уха Жидкость при тимпаноцентезе

• 
  Слайд 22
  

  Преаналитические требования по видам биоматериала Материал при инфекциях НДП

  Исследуют утреннюю порцию свободно откашливаемой мокроты, натощак. Перед откашливанием необходимо почистить зубы, десны, язык, слизистую щек и прополоскать рот кипяченой водой. Мокроту собирают в стерильный контейнер с завинчивающейся крышкой. Сроки доставки в лабораторию – не более 1,5-2 часов от момента ее получения Мокрота Специальным шприцем в трахею вводят около 10 мл стерильного физраствора и собирают откашливаемый смыв в стерильную посуду. Бронхиальные смывы могут быть сделаны с помощью бронхоскопа. Смывную жидкость помещают в стерильный контейнер с крышкой, которую плотно завинчивают Трахеобронхиальные смывы Кожу перед пункцией обрабатывают 2% раствором йода, а затем 70% этиловым спиртом. После прокола жидкость собирают шприцем в стерильную пробирку и незамедлительно отправляют в лабораторию Плевральная жидкость

• 
  Слайд 23

  Основные цели лечения при инфекциях ЛОР-органов, ВДП и НДП

  Эффективное лечение Снижение длительности и выраженности симптомов заболевания Эрадикация возбудителя Предупреждение развития осложнений

• 
  Слайд 24

  Стандарты антибактериальной терапии

  Эрадикация основная цель антибиотикотерапии инфекций респираторного тракта и ЛОР-органов Активность антибиотика в отношении основных возбудителей Достаточные концентрации антибиотика в очаге инфекции Поддержание подавляющих рост бактерий концентраций в течение необходимого времени

• 
  Слайд 25
  

    Эрадикация возбудителей инфекций респираторного тракта позволяет разорвать порочный круг течения заболевания. Острое течение ОБОСТРЕНИЕ Неадекватный антибиотик Персистенция бактерий Селекция резистентности Отсутствие эрадикации Адекватный антибиотик Эрадикация ВЫЗДОРОВЛЕНИЕ Увеличение безрецидивного интервала